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在特定領域或情境中，展示產品、服務或解決方案如何被實際應用以解決具體問題的實例
實驗背景：小鼠脛骨是骨代謝、骨疾病、干細胞及分子生物學研究中的重要組織樣本。在 DNA、RNA 提取、蛋白定量等檢測中，需將堅硬致密的骨組織研磨成均勻細膩的粉末，以充分釋放生物分子。然而，骨組織礦化程度高、質地堅硬，傳統研磨方式難以徹底破碎，且易因產熱導致核酸或蛋白質降解。本實驗采用新芝生物高通量組織研磨器 SCIENTZ?48L 對小鼠脛骨進行干磨處理，驗證其在常溫或低溫條件下高效破碎骨組織的能力。
傳統研磨方法存在的痛點
組織堅硬難破碎：骨組織礦化程度高、質地致密堅硬，傳統研缽或手動勻漿難以將其徹底破碎，常殘留骨渣，影響生物分子釋放效率。
成分易受熱降解：研磨過程中產生的熱量易導致 RNA、蛋白質等熱敏性生物分子降解，影響后續 PCR、Western blot 等檢測結果的準確性。
易產生交叉污染：傳統研磨工具清洗繁瑣，多批次樣品處理時易造成樣品間交叉污染，影響實驗可靠性。
處理效率低下：手工研磨耗時費力，且重復性差，難以適應高通量樣本處理需求，制約科研實驗進度。
實驗準備
實驗樣品：小鼠脛骨組織
實驗目的：驗證新芝生物高通量組織研磨器 SCIENTZ?48L 對小鼠脛骨的破碎效果，確保獲得均勻細膩的骨組織粉末，滿足 DNA/RNA 提取、蛋白分析、酶活性檢測等后續分子生物學實驗的要求。
實驗耗材：2ml離心管、6mm研磨珠2顆，3mm研磨珠若干
實驗設備：
實驗步驟
樣本準備：取新鮮或凍存小鼠脛骨組織適量（約 50–100 mg），剔除附著軟組織后置于2 ml 離心管中。若進行 RNA 提取，建議使用無 RNA 酶的專用離心管，并全程低溫操作。
參數設置：研磨頻率：60Hz,單次運行時間：60秒,循環次數：6次,間歇暫停：5秒,本實驗為干磨，無需添加任何溶劑。
進行研磨：將離心管裝入適配器，對稱配平后鎖緊艙門，啟動研磨程序。設備通過高頻三維振蕩帶動研磨珠高速撞擊、剪切骨組織，實現細胞快速破碎。
結束取樣：研磨完成后，取出離心管，即可獲得均勻細膩的骨組織粉末，無可見骨塊殘留。
實驗結果
左：研磨前 ; 右：研磨后
經高通量組織研磨器 SCIENTZ?48L處理后，小鼠脛骨由堅硬的骨組織轉變為均勻細膩的粉末狀，破碎充分，無肉眼可見骨渣殘留。經后續檢測，核酸完整性良好，蛋白質提取效率顯著提升，滿足分子生物學實驗要求。
注意事項
01進行 DNA、RNA 或蛋白質提取時，建議使用預冷離心管，或采用間歇循環模式，避免樣品升溫導致生物分子降解。
02新鮮組織建議采集后立即處理或快速凍存，避免反復凍融影響樣品質量。
03裝樣量不宜過多，以不超過離心管容量 1/3 為佳，確保研磨珠運動空間充足。
04干磨過程務必蓋緊管蓋，防止骨粉飛濺、泄漏或交叉污染。
05骨組織硬度較高，優先使用氧化鋯研磨珠，提升破碎效果與耐用性。
實驗結果表明，新芝生物高通量組織研磨器 SCIENTZ?48L能夠高效處理小鼠脛骨這類堅硬骨組織，在低溫條件下實現細胞的充分破碎，獲得均勻細膩的粉末樣品。該方法操作簡便、重復性好、通量高，有效避免了傳統研磨方法中的產熱降解和交叉污染問題，顯著提升了生物樣品前處理的效率與質量，適用于分子生物學、藥物研發、病理檢測及相關科研領域中的骨組織樣品制備環節。
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